血液是维系生命的源泉。如果把血管视为身体里的一条条运河，那么血液就是河水，时时刻刻不停流淌，维护身体各器官的正常运转。
对于科研人员来说，血液样本是检测单上的常客。血液样本一般分为全血、血浆、血清三种，这三者有何区别？又该如何收集？今天我们就一起来了解一下吧。
血液是在心脏和血管腔内循环流动的一种组织，由液体成分血浆和有形成分血细胞两部分组成。
全血
血液经抗凝处理后的全部血液即为全血，包括血细胞和血浆的所有成分
血浆
全血离心除去血细胞后，所得到的淡黄色液体即为血浆
血清
全血凝固后分离出来的，不含纤维蛋白原的淡黄色澄清液体
血液里储存着人体的健康信息，很多疾病需要验血。不同的检验目的，所需要检测的血液样本也不同。
全血多用于血细胞、血常规、血沉等方面的测定
血浆多用于凝血等方面的测定
血清多用于血液生化、免疫等方面的测定
血浆、血清样本收集的主要方法
01试剂盒检测的血浆收集
应使用抗凝管采集全血，并尽快进行血浆分离：1000转离心10分钟，分离出血浆和细胞组分。然后将采集好的血浆转移至单独的冻存管，按照每400~500ul/管分装好。若短期保存，可放入- 20°C 或- 70°C冰箱保存。若长期保存，需放入液氮保存。
值得注意的是，血浆收集应使用抗凝管，抗凝剂可以用柠檬酸钠或EDTA等，切记不可使用肝素抗凝，因为肝素对RNA实验有较大影响。
02试剂盒检测的血清收集应使用凝血管采集全血，需在采血后两小时内分离血清。采血后，轻轻倒转采血管混合4~5次，直立置于室温下，待血液完全凝固（一般约一小时）后即可开始分离操作。1000转离心10分钟，分离出血清。将采集好的血清转移至单独的冻存管，按照每400~500ul/管分装好。若短期保存，可放入- 20°C 或- 70°C冰箱保存。若长期保存，需放入液氮保存。
血浆、血清分离的注意事项
血浆、血清分离过程中特别需要注意两点：防止溶血和细胞混入。具体操作中，需遵照快、慢、冷三个原则。
快
血液环境的稳定性与保存时间的长短呈反比。细胞膜的稳定性会随时间的推移而逐渐下降，基于此，应尽快开展血浆、血清的分离。同时严格按照操作说明进行分离，避免出现溶血现象。分离后，也要避免反复冻融。
慢
离心的速度不能过快，过快的离心速度会造成红细胞压积，容易产生溶血。
冷
血液样本如不能马上进行血浆与血清的分离，则应尽量冷藏保存和运输。但绝不可冷冻，否则血细胞会形成冰晶，从而造成细胞破裂产生溶血。
(1) 抗凝剂的选择：不同的抗凝剂有其不同的分子构型，会对血液中各细胞的细胞膜产生不同的作用，选择一款合适的抗凝剂至关重要
(2) 样品处理不当的危害：血液样本存放过程中，温度过高或反复冻融会对细胞膜产生严重的损害，会使细胞膜上的结构蛋白构象发生改变，进而造成细胞膜的弹性降低以致于破解产生溶血现象。所以，用于分离血浆、血清的血液样本应避免反复冻融。
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